<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">surgonco</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Креативная хирургия и онкология</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Creative surgery and oncology</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2076-3093</issn><issn pub-type="epub">2307-0501</issn><publisher><publisher-name>Башкирский государственный медицинский университет</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.24060/2076-3093-2020-10-3-241-248</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">surgonco-512</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>REVIEWS</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Современные аспекты и перспективы применения дерматоскопии в дерматоонкологии</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Dermatoscopy in Dermato-Oncology: Current State and Perspectives</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-8674-2803</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Хисматуллина</surname><given-names>З. Р.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Khismatullina</surname><given-names>Z. R.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>д.м.н., профессор, кафедра дерматовенерологии с курсами дерматовенерологии и косметологии ИДПО,</p><p>Республика Башкортостан, Уфа</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Dr. Sci. (Med.), Prof., Department of Dermatovenereology with Advanced Professional Education Courses in Dermatovenereology and Cosmetology,</p><p>Ufa</p></bio><email xlink:type="simple">hzr07@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-7026-9166</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Чеботарев</surname><given-names>В. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Chebotaryov</surname><given-names>V. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>д.м.н., профессор, кафедра дерматовенерологии и косметологии с курсом ДПО,</p><p>Ставрополь</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Dr. Sci. (Med.), Prof., Department of Dermatovenereology and Cosmetology with a course of Advanced Professional Education, </p><p>Stavropol</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-3929-2237</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Бабенко</surname><given-names>Е. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Babenko</surname><given-names>E. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>кафедра дерматовенерологии с курсами дерматовенерологии и косметологии ИДПО,</p><p>Республика Башкортостан, Уфа</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Department of Dermatovenereology with Advanced Professional Education Courses in Dermatovenereology and Cosmetology,</p><p>Ufa</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>Башкирский государственный медицинский университет</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Bashkir State Medical University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>Ставропольский государственный медицинский университет</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Stavropol State Medical University</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2020</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>30</day><month>11</month><year>2020</year></pub-date><volume>10</volume><issue>3</issue><fpage>241</fpage><lpage>248</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Хисматуллина З.Р., Чеботарев В.В., Бабенко Е.А., 2020</copyright-statement><copyright-year>2020</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Хисматуллина З.Р., Чеботарев В.В., Бабенко Е.А.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Khismatullina Z.R., Chebotaryov V.V., Babenko E.A.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.surgonco.ru/jour/article/view/512">https://www.surgonco.ru/jour/article/view/512</self-uri><abstract><p>Визуальный осмотр новообразований кожи до сих пор остается абсолютно субъективным методом диагностики, что требует подтверждения другими инструментальными методами исследования. Особенно это актуально для диагностики злокачественных новообразований кожи. В данной обзорной статье представлены диагностические возможности и перспективы применения дерматоскопии в дерматоонкологической практике, поскольку именно этот диагностический метод получает все более широкое распространение в клинической практике по всему миру. Популярность дерматоскопии отражена в современных литературных источниках, где подавляющее большинство научных работ посвящено дерматоскопии в  качестве основного метода обследования злокачественных новообразований кожи. В настоящее время данный диагностический метод считается одним из  основных инструментов визуализации поверхностных новообразований кожи. Дерматоскопия позволяет многократно исследовать одну и ту же область кожного покрова, не повреждая кожу, а также контролировать прогрессирование опухолевого процесса, динамику клинической картины и исход лечения. Современная дерматоскопия привела не только к снижению частоты хирургических процедур (при своевременной диагностике новообразований кожи), но и к увеличению использования неинвазивных методов лечения, таких как топические препараты и фотодинамическая терапия.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Visual examination of skin neoplasms remains a completely subjective method of diagnosis and requires instrumental confirmation, which is particularly relevant with malignant neoplasms. The review describes the diagnostic capacities and perspectives of dermatoscopy in dermato-oncological practice as a diagnostic method with an increasingly common clinical application. Success of dermatoscopy is evident from the modern publication corpus, with its high content referring to dermatoscopy as the main examination method in skin tumours. This diagnostic method is presently considered among the major tools for surface skin neoplasm imaging. Dermatoscopy enables an innocuous repeated spot examination of skin to monitor the tumour progression, clinical dynamics and treatment outcome. Modern dermatoscopy has facilitated both the reduction in surgical rate (provided a timely malignancy diagnosis) and progress in non-invasive treatment, such as topical drugs and photodynamic therapy.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>дерматоскопия</kwd><kwd>кожи новообразования</kwd><kwd>базальноклеточная карцинома</kwd><kwd>плоскоклеточная карцинома</kwd><kwd>лимфома</kwd><kwd>меланома</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>dermatoscopy</kwd><kwd>skin neoplasms</kwd><kwd>basal cell carcinoma</kwd><kwd>flat cell carcinoma</kwd><kwd>lymphoma</kwd><kwd>melanoma</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><sec><title>Введение</title><p>Злокачественные новообразования кожи — одна из самых распространенных злокачественных патологий не только в Российской Федерации (РФ), но и по всему миру [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Меланома является наиболее опасной формой злокачественных новообразований кожи и представляет собой крупную угрозу общественному здоровью на международном уровне. По данным Всемирной организации здравоохранения, ежегодно в мире регистрируется около 131 000 случаев меланомы [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>]. В США регистрируется около 90 000 новых случаев и более 9000 смертельных исходов [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. А в Европе сообщается о регистрации 100 000 новых случаев меланомы в год и 22 000 смертей, связанных с данным новообразованием [<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>]. В РФ ежегодно диагностируется около 9000 новых случаев меланомы, но эти цифры не отражают истинную ситуацию по заболеваемости в нашей стране. В отличие от других злокачественных новообразований кожи, уровень заболеваемости меланомой неуклонно увеличивается за последние несколько десятилетий. Так, среднегодовой прирост заболеваемости меланомой в России составил 4,95%, а в США — 4% [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>].</p><p>В прошлом первичной формой диагностики меланомы было визуальное клиническое обследование, имеющее ограниченный и переменный характер точности, что приводило к значительным проблемам при раннем обнаружении болезни. В последние годы широко стала применяться дерматоскопия с высоким разрешением изображений кожи, которая способствует визуализации более глубоких структур кожи и позволяет улучшить диагностические возможности подготовленных специалистов при диагностике новообразований кожи [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>]. Однако несколько исследований показали ограниченное применение дерматоскопии при отсутствии должной подготовки специалиста [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>]. Но даже при достаточной подготовке специалистов визуальный осмотр новообразований кожи остается абсолютно субъективным методом диагностики, что требует подтверждения другими инструментальными методами исследования. Особенно это актуально для диагностики злокачественных новообразований кожи.</p><p>Новые технологии визуализации, такие как инфракрасное сканирование кожи и конфокальная микроскопия, обеспечивают значимый диагностический потенциал для более высокой точности распознавания ново­образований кожи [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>]. Кроме того, многочисленные исследования с конца 1990-х годов были сосредоточены на разработке автоматизированного анализа дерматоскопических изображений кожных поражений [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. Сочетание современных технологий имеет высокий потенциал в качестве дополнения к клинической диагностике, улучшая частоту выявления новообразований кожи и распознавание пациентов с высоким риском развития опухоли [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>].</p><p>В этой статье мы в первую очередь сосредоточимся на дерматоскопической диагностике в связи с тем, что именно этот диагностический метод получает все более широкое распространение в клинической практике по всему миру [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>]. Популярность дерматоскопии отражена в современных литературных источниках, где подавляющее большинство научных работ посвящено дерматоскопии в качестве основного метода обследования злокачественных новообразований кожи.</p><p>Термин «анализ дерматоскопических изображений» был впервые упомянут в работах S. W. Menzies и соавт. (2018) и впоследствии популяризирован М. Е. Celebi и соавт. (2018) [<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>]. Предложены три основных аспекта анализа дерматоскопических изображений: сегментация, выделение признаков и классификация. Сегментация представляет собой обнаружение границ очагов поражения на коже, включая локализацию повреждений на изображении. Сегментация — один из немногих шагов в анализе дерматоскопических изображений, который не требует многих знаний и умений, что отчасти объясняет обилие исследований сегментации изображений в современной литературе [<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>]. Большое разнообразие форм, размеров и окраски поражений кожи, типов и текстур кожного покрова, наличие внутрикожных элементов (кровеносные сосуды, придатки кожи), а также несогласованные условия визуализации затрудняют разработку надежного алгоритма сегментации, способного упростить клиническую практику дерматологов при подозрении опухолевого процесса [<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>]. Точная сегментация изображения может иметь большое значение для извлечения информативных признаков, но не является окончательным и максимально достоверным инструментом диагностики новообразований кожи [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>].</p><p>Исторически сложилось так, что классификации на основе сегментации дерматоскопического изображения доминировали в литературных данных [<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>]. Затем, при развитии данной тематики и более глубоком ее изучении, постепенно стали появляться в литературе классификации дерматоскопических изображений без особого акцента на сегментации изображения [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Однако следует отметить, что сегментация дерматоскопических изображений по-прежнему имеет значение для временного анализа повреждений кожи при дерматоскопии. В основе функции обнаружения признаков в дерматоскопическом изображении лежит необходимость в выявлении определенных дерматоскопических критериев и их локализаций (пигментные сети, бело-голубые области, полосы, милиарноподобные кисты, глобулы и др.) и количество клинически значимых окрасок элементов [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. С различной степенью важности данные критерии были включены в алгоритмы диагностики новообразований кожи.</p><p>Ранее дерматоскопические классификаторы были ограничены только меланоцитарными поражениями, т. е. происходящими из пигментных клеток кожи. Такие повреждения кожи были классифицированы в один из двух диагностических классов: доброкачественные новообразования и меланома [<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>]. С появлением результатов современных научных исследований, посвященных дерматоскопическому анализу изображений кожных новообразований появилась уточненная классификация меланоцитарных поражений: доброкачественная опухоль, атипичная меланоцитарная опухоль и меланома. Так, в опубликованной классификации Международного сотрудничества (2018) в области визуализации кожи (ISIC) приведены семь классов новообразований: меланома, меланоцитарный невус, базальноклеточный рак, актинический кератоз, доброкачественный кератоз, дерматофиброма и сосудистое поражение кожи [<xref ref-type="bibr" rid="cit22">22</xref>].</p></sec><sec><title>Диагностика и мониторинг меланоцитарных поражений с помощью дерматоскопии</title><p>Общеизвестно, что диагностика меланомы на поздней стадии не представляет особых затруднений. Однако ее выявление на ранней стадии развития имеет решающее значение для предотвращения глубокой инвазии опухоли и метастатического распространения, что улучшает показатели выживаемости и снижает стоимость лечения [<xref ref-type="bibr" rid="cit23">23</xref>]. Для распознавания меланомы на ранней стадии метод дерматоскопии оказался мощным инструментом диагностики, поскольку ее точность примерно на 50% выше, чем точность диагностики меланомы невооруженным глазом [<xref ref-type="bibr" rid="cit24">24</xref>]. В соответствии с метаанализом S. Gandini и соавт. (2005) пациентов с высоким риском развития меланомы можно диагностировать, подсчитав количество невусов на руке и определив их подтип (например, атипичный невус) [<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>]. Пациент с 11–15 родимыми пятнами на руке, вероятно, имеет около 50 невусов на теле и имеет в пять раз выше риск развития меланомы, чем человек без каких-либо родимых пятен на руке. Но в то же время пациент с любым атипичным невусом (даже в единственном числе) имеет в десятки раз более высокий риск развития меланомы, чем человек без атипичных множественных невусов [<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>]. Кроме того, количество атипичных невусов значительно увеличивает риск развития меланомы: с 1,60 для одного атипичного невуса до 10,49 для пяти атипичных невусов.</p><p>В современной литературе описывается множество дерматоскопических критериев меланоцитарных поражений. Алгоритм Штольца, разработанный в 1994 году, также известный как правило ABCD (асимметрия, границы, цвет, дерматоскопические структуры), определяет доброкачественные, подозрительные и злокачественные поражения в соответствии с количественной оценкой. Другой алгоритм, предложенный S. W. Menzies и соавт. в 1996 году, основывается на отсутствии двух отрицательных критериев и наличии хотя бы одного положительного критерия для дифференцировки меланомы. Кроме того, предложен семиточечный контрольный список Argenziano и соавт. в 1998 году, состоящий из трех основных и четырех второстепенных критериев для выявления доброкачественных и злокачественных поражений на основе балльной системы. Он был первым, в который была включена оценка сосудистого рисунка.</p><p>В отличие от стабильности течения обыкновенного невуса кожи, меланома с течением времени развивается из пограничных невусов, что вызывает необходимость дерматоскопического наблюдения за пациентами с высоким риском трансформации невусов. Безусловно важным является выявление новых очагов меланомы, что было подчеркнуто в проспективном наблюдательном исследовании, проведенном Salerni и соавт. [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>]. Было обследовано 618 пациентов с высоким риском развития меланомы с 1999 по 2008 год, и среди 1152 проанализированных иссеченных очагов 32,4% соответствовали очагам de novo. В целом большинство очагов (63,2%) были иссечены из-за изменений в дерматоскопических картинах, и при этом асимметричное увеличение было наиболее частым изменением (57,4%). Следует отметить, что у пациентов выявлялись меланомы в любое время в течение 10-летнего периода наблюдения, что подтверждает необходимость длительного мониторинга пациентов с высоким риском трансформации [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>].</p><p>Таким образом, дерматоскопия является мощным диагностическим методом раннего и быстрого выявления меланом. Современная литература в области дерматологии приписывает высокий уровень доказательности данному методу [<xref ref-type="bibr" rid="cit27">27</xref>]. Врачи, начинающие использовать дерматоскопию в практической деятельности, могут сперва основываться на алгоритмах диагностики, а затем перейти к целостному распознаванию картины поражения кожи.</p></sec><sec><title>Диагностика немеланоцитарных опухолей кожи с помощью дерматоскопии</title><p>Базальноклеточный рак (БКР) является наиболее распространенным немеланоцитарным раком кожи во всем мире [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Ведение пациентов с БКР зависит от нескольких важных факторов: размер и локализация опухоли, гистологический подтип, особенности агрессии опухоли кожи, неудачи предшествующего лечения и наличие иммуносупрессивного статуса. Дерматоскопия может иметь диагностическую пользу для дифференцировки подтипов узлового, инфильтративного или поверхностного поражения БКР [<xref ref-type="bibr" rid="cit28">28</xref>]. Несигментированные узловые поражения являются наиболее распространенным подтипом и чаще всего располагаются в области головы и шеи. При визуальном обследовании эти поражения представлены в виде перламутровых, блестящих папул или узелков с телеангиэктазиями. При дермоскопическом исследовании очага поражения при БКР наблюдаются несколько густых дендритных телеангиэктазий, разветвляющихся над очагом поражения. Как клинические, так и дерматоскопические аспекты в совокупности являются весьма информативными для диагностики узловой формы БКР. Поверхностные непигментированные очаги БКР клинически при визуальном обследовании определяются рыхлыми, чешуйчатыми и плоскими эритематозными бляшками. При дальнейшем дерматоскопическом исследовании обычно выявляются короткие и тонкие телеангиэктазии или линейные сосуды на красноватом фоне с множественными микроэрозиями. Наконец, инфильтративные очаги БКР клинически представлены в виде бляшек или впадин с нечеткими границами и наличием атрофии. При дерматоскопии на белом фоне наблюдаются мелкие и рассеянные телеангиэктазии, разветвляющиеся над очагом поражения.</p><p>Пигментированные очаги БКР могут также быть дифференцированы от других пигментных поражений кожи дерматоскопически. На основе классического алгоритма S. W. Menzis и соавт. (2000) пигментированные очаги БКР не должны иметь пигментированной сети, но должны иметь по крайней мере один из следующих пяти положительных критериев: большие сине-серые яйцевидные гнезда, множественные сине-серые глобулы, кленовые листовидные области, области спицевых колес и дендритные телеангиэктазии. Дифференциальный диагноз может быть проведен с пигментным поражением кожи, окруженным ангиомами. Это поражение кожи может быть клинически неправильно определено как тромбированная ангиома, в то время как дерматоскопическое исследование четко выявляет признак «кленовый листообразный узор», характерный для пигментированного БКР, и отсутствие «лакунарного поражения» при ангиомах.</p><p>Кератиноцитарные опухоли представляют собой группу поражений, включающую актинический кератоз (АК), интраэпидермальную карциному (ИЭК), также известную как болезнь Боуэна или плоскоклеточная карцинома in situ, инвазивную плоскоклеточную карциному (ПКК) и кератоакантому. Актинический кератоз представляет собой диспластическую пролиферацию кератиноцитов, способную потенциально прогрессировать в ПКК [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>]. Очаги АК часто обрабатываются топическими препаратами (кератолитики, имиквимод), в то время как инвазивные ПКК в первую очередь требуют хирургического лечения [<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>]. Поэтому крайне важно провести раннюю диагностику актинического кератоза, которая была значительно улучшена с помощью дерматоскопии. I. Zalaudek и соавт. в 2014 году выявили специфический дерматоскопический рисунок актинического кератоза, локализованного на лице, а именно так называемый «клубничный рисунок», сочетающий в себе четыре критерия: красная псевдосеть, белые чешуйки, тонкие линейно-волнистые сосуды, окружающие волосяные фолликулы, а также волосяные фолликулы, заполненные желтоватыми кератотическими пробками [<xref ref-type="bibr" rid="cit31">31</xref>].</p><p>Однако B. N. Akay и соавт. в 2010 году указали, что АК имеет ряд дерматоскопических особенностей, общих с lentigo maligna и lentigo maligna melanoma, что подтверждает необходимость дальнейшего подтверждения диагноза АК с помощью гистологии или конфокальной микроскопии [<xref ref-type="bibr" rid="cit32">32</xref>]. Для ИЭК характерно сочетание точечных и клубочковых сосудов с желтоватыми непрозрачными чешуйками, что определяет диагноз в 98% случаев, в то время как пигментный вариант ИЭК неоднозначен и постановка окончательного диагноза зачастую требует гистологического исследования для исключения диагноза беспигментной меланомы или пигментной формы БКК. При отсутствии меланоцитарных дерматоскопических критериев наличие при дерматоскопии коричневых или серых точек, распределенных линейно в очаге, или присутствие клубочков сосудов может вывести к подозрению на пигментную болезнь Боуэна [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>]. Наконец, инвазивная ПКК обычно характеризуется полиморфными тромбированными сосудами на периферии, белыми бесструктурными зонами, кератиновыми массами и изъязвлениями в центре [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>]. Также наличие быстрорастущих очагов, имеющих сходные дерматоскопические признаки, может свидетельствовать о наличии кератоакантомы [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>].</p><p>Наравне с меланоцитарными поражениями кожи одной из наиболее сложных диагностических проблем в дерматоонкологии является клиническая диагностика кожных лимфопролиферативных заболеваний. Зачастую дерматоонкологи испытывают трудности в идентификации лимфопролиферативных заболеваний из-за отсутствия простых однозначных диагностических признаков и быстро меняющихся классификаций [<xref ref-type="bibr" rid="cit35">35</xref>]. В этом сложном контексте дерматоскопия может играть адъювантную роль в постановке диагноза, поскольку она подходит в качестве третьего диагностического инструмента в арсенале дерматолога между клиническим и гистопатологическим исследованием. Наиболее частой лимфомой кожи, происходящей из Т-лимфоцитов, является грибовидный микоз [<xref ref-type="bibr" rid="cit36">36</xref>]. В ретроспективном анализе, проведенном A. Lallas и соавт. (2013), выявлена характерная дерматоскопическая картина ранней стадии: мелкие короткие линейные сосуды, ассоциированные с оранжево-желтоватыми пятнистыми участками [<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>]. Авторы обнаружили, что характерное расположение линейных сосудов, называемых сперматозоидоподобными, является специфичным для грибовидного микоза. В статье, опубликованной S. H. Morariu и соавт. (2014), была описана характерная дерматоскопическая картина педжетоидного ретикулеза: дискретная однородная розовая фоновая эритема, связанная с точечными/клубочковыми сосудами и белыми чешуйками [<xref ref-type="bibr" rid="cit38">38</xref>]. А в недавно опубликованной статье G. K. Gahramani и соавт. (2018) описали дерматоскопические особенности фолликулотропного грибовидного микоза: фолликулярные корки и пустулы, терминальные волоски, перифолликулярная акцентуация и небольшие белые бесструктурные области [<xref ref-type="bibr" rid="cit39">39</xref>].</p><p>Также достаточно распространенной лимфопролиферативной патологией является лимфоматоидный папулез, являющийся первичной кожной CD30+ Т-клеточной лимфомой. Лимфоматоидный папулез обычно имеет доброкачественное течение, и поражение на разных стадиях можно наблюдать у одного и того же человека. Как следствие полиморфизма кожных поражений дерматоскопическая картина изменяется в зависимости от различных фаз заболевания. В частности, начальное воспалительное папулезное поражение демонстрирует сосудистый рисунок радиально расположенных извилистых сосудов, окруженных белой бесструктурной областью [<xref ref-type="bibr" rid="cit40">40</xref>]. В гиперкератотических папулах беловатая область постепенно преобладает над сосудами, которые становятся менее заметными. На последней стадии некротические изъязвления замещают белесую бесструктурную область, причем сосуды видны только на периферии каждого очага поражения [<xref ref-type="bibr" rid="cit40">40</xref>]. Кроме Т-клеточных лимфом дерматоскопические особенности описаны у первичных кожных В-клеточных лимфом. В частности, наиболее частыми признаками данного заболевания являются белые очаги с фоном лососевого цвета и ветвящимися сосудами по пери­ферии [<xref ref-type="bibr" rid="cit41">41</xref>].</p></sec><sec><title>Заключение</title><p>Таким образом, диагностический метод «дерматоскопия» значительно улучшил точность постановки диагноза рака кожи в реальном времени. Несмотря на то что выявление специфических дерматоскопических признаков требует специального обучения специалистов, дерматоскопическое обследование является более точным, чем визуальное клиническое обследование невооруженным глазом, для диагностики как меланоцитарных, так и немеланоцитарных новообразований кожи. Тем не менее гистологическое исследование является обязательным стандартом для диагностики сомнительных поражений кожи, таких как пигментный актинический кератоз и пигментная болезнь Боуэна. Дерматоскопическая картина последних очень схожа с признаками злокачественной меланомы. Кроме того, пациенты высокого риска должны находиться на диагностическом контроле с проведением последовательной цифровой дерматоскопии, что позволит выявлять любые изменения в существующих очагах и осуществлять наблюдение за новыми очагами поражения. Метод «дерматоскопия» привел не только к снижению частоты хирургических процедур при своевременной диагностике новообразований кожи, но и к увеличению использования неинвазивных методов лечения, таких как топические препараты и фотодинамическая терапия.</p><p>Информация о конфликте интересов. Конфликт интересов отсутствует.</p><p>Инфoрмaция o спoнсoрстве. Дaннaя рaбoтa не финaнсирoвaлaсь.</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2018. CA Cancer J Clin. 2018;68(1):7–30. DOI: 10.3322/caac.21442</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2018. CA Cancer J Clin. 2018;68(1):7–30. DOI: 10.3322/caac.21442</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Elder D.E., Massi D., Scolyer R.A., Willemze R. (eds.). WHO Classification of Skin Tumours. WHO Press; 2018. 500 p.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Elder D.E., Massi D., Scolyer R.A., Willemze R. (eds.). WHO Classification of Skin Tumours, WHO Press; 2018. 500 p.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Guy G.P. Jr, Machlin S.R., Ekwueme D.U., Yabroff K.R. Prevalence and costs of skin cancer treatment in the U.S., 2002–2006 and 2007–2011. Am J Prev Med. 2015;48(2):183–7. DOI: 10.1016/j.amepre.2014.08.036</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Guy G.P. Jr, Machlin S.R., Ekwueme D.U., Yabroff K.R. Prevalence and costs of skin cancer treatment in the U.S., 2002–2006 and 2007–2011. Am J Prev Med. 2015;48(2):183–87. DOI: 10.1016/j.amepre.2014.08.036</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bray F., Ferlay J., Soerjomataram I., Siegel R.L., Torre L.A., Jemal A. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2018;68(6):394–424. DOI: 10.3322/caac.21492</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bray F., Ferlay J., Soerjomataram I., Siegel R.L., Torre L.A., Jemal A. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2018;68(6):394–424. DOI: 10.3322/caac.21492</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Давыдов М.И., Аксель Е.М. Статистика злокачественных новообразований в 2014 г. Данные по России. Евразийский онкологический журнал. 2016;4(4):692–879.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Davydov M.I., Axel E.M. Statistics of malignant neoplasms in 2014. Data on Russia. Eurasian Oncology Journal. 2016;4(4):692–879 (In Russ.).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Berglund S., Bogren L., Paoli J. Diagnostic accuracy and safety of short-term teledermoscopic monitoring of atypical melanocytic lesions. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020;34(6):1233–39. DOI: 10.1111/jdv.16144</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Berglund S., Bogren L., Paoli J. Diagnostic accuracy and safety of short-term teledermoscopic monitoring of atypical melanocytic lesions. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2020;34(6):1233–9. DOI: 10.1111/jdv.16144</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Forsea A.M., Tschandl P., Del Marmol V., Zalaudek I., Soyer H.P., Geller A.C., et al. Factors driving the use of dermoscopy in Europe: a panEuropean survey. Br J Dermatol. 2016;175(6):1329–37. DOI: 10.1111/bjd.14895</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Forsea A.M., Tschandl P., Del Marmol V., Zalaudek I., Soyer H.P., Geller A.C., et al. Factors driving the use of dermoscopy in Europe: a pan-European survey. Br J Dermatol. 2016;175(6):1329–37. DOI: 10.1111/bjd.14895</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bakos R.M., Blumetti T.P., Roldán-Marín R., Salerni G. Noninvasive imaging tools in the diagnosis and treatment of skin cancers. Am J Clin Dermatol. 2018;19(Suppl. 1):3–14. DOI: 10.1007/s40257-018-0367-4</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bakos R.M., Blumetti T.P., Roldán-Marín R., Salerni G. Noninvasive imaging tools in the diagnosis and treatment of skin cancers. Am J Clin Dermatol. 2018;19(Suppl. 1):3–14. DOI: 10.1007/s40257-018-0367-4</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Barata C., Ruela M., Francisco M., Mendonca T., Marques J.S. Two systems for the detection of melanomas in dermoscopy images using texture and color features. IEEE Syst J. 2014;8(3):965–79. DOI: 10.1109 JSYST.2013.2271540</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Barata C., Ruela M., Francisco M., Mendonca T., Marques J.S. Two systems for the detection of melanomas in dermoscopy images using texture and color features. IEEE Syst J. 2014;8(3):965–79. DOI: 10.1109/JSYST.2013.2271540</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Codella N., Cai J., Abedini M., Garnavi R., Halpern A., Smith J.R. Deep learning, sparse coding, and SVM for melanoma recognition in dermoscopy images. In: Luping Zhou, Li Wang, Qian Wang, Yinghuan Shi (eds.). Machine Learning in Medical Imaging. Springer; 2015. P. 118–126.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Codella N., Cai J., Abedini M., Garnavi R., Halpern A., Smith J.R. Deep learning, sparse coding, and SVM for melanoma recognition in dermoscopy images. In: Luping Zhou, Li Wang, Qian Wang, Yinghuan Shi (eds.). Machine Learning in Medical Imaging. Springer; 2015. P. 118–126.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Noel Codella N., Quoc-Bao Nguyen, Pankanti Sh., Gutman D., Helba B., Halpern A., et al. Deep learning ensembles for melanoma recognition in dermoscopy images. IBM J Res Develop. 2017;61(4/5):5:1–5, 15.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Noel Codella N., Quoc-Bao Nguyen, Pankanti Sh., Gutman D., Helba B., Halpern A., et al. Deep learning ensembles for melanoma recognition in dermoscopy images. IBM J Res Develop. 2017;61(4/5):5:1–5, 15.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Piliouras P., Buettner P., Soyer H.P. Dermoscopy use in the next generation: a survey of Australian dermatology trainees. Australas J Dermatol. 2014;55(1):49–52. DOI: 10.1111/ajd.12061</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Piliouras P., Buettner P., Soyer H.P. Dermoscopy use in the next generation: a survey of Australian dermatology trainees. Australas J Dermatol. 2014;55(1):49–52. DOI: 10.1111/ajd.12061</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bahadoran P., Malvehy J. Dermoscopy in Europe: coming of age. Br J Dermatol. 2016;175(6):1132–3. DOI: 10.1111/bjd.15128</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bahadoran P., Malvehy J. Dermoscopy in Europe: coming of age. Br J Dermatol. 2016;175(6):1132–33. DOI: 10.1111/bjd.15128</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Celebi M.E., Mendonca T., Marques J.S. (eds.). Dermoscopy image analysis. Boca Raton: CRC Press; 2015. 486 p.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Celebi M.E., Mendonca T., Marques J.S. (eds.). Dermoscopy image analysis. Boca Raton: CRC Press; 2015. 486 p.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Celebi M.E., Wen Q., Iyatomi H., Shimizu K., Zhou H., Schaefer G. A state-of-the-art survey on lesion border detection in dermoscopy images. In: Celebi M.E., Mendonca T., Marques J.S. (eds.). Dermoscopy image analysis. Boca Raton: CRC Press; 2015. P. 97–129.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Celebi M.E., Wen Q., Iyatomi H., Shimizu K., Zhou H., Schaefer G. A state-of-the-art survey on lesion border detection in dermoscopy images. In: Celebi M.E., Mendonca T., Marques J.S. (eds.). Dermoscopy image analysis. Boca Raton: CRC Press; 2015. P. 97–129.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Barata C., Celebi M.E., Marques J.S. Towards a robust analysis of dermoscopy images acquired under different conditions. In: Celebi M.E., Mendonca T., Marques J.S. (eds.). Dermoscopy image analysis. Boca Raton: CRC Press; 2015. P. 1–22.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Barata C., Celebi M.E., Marques J.S. Towards a robust analysis of dermoscopy images acquired under different conditions. In: Celebi M.E., Mendonca T., Marques J.S. (eds.). Dermoscopy image analysis. Boca Raton: CRC Press; 2015. P. 1–22.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Garnavi R., Aldeen M., Celebi M.E., Varigos G., Finch S. Border detection in dermoscopy images using hybrid thresholding on optimized color channels. Comput Med Imag Graph. 2011;35(2):105–15. DOI: 10.1016/j.compmedimag.2010.08.001</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Garnavi R., Aldeen M., Celebi M.E., Varigos G., Finch S. Border detection in dermoscopy images using hybrid thresholding on optimized color channels. Comput Med Imag Graph. 2011;35(2):105–115. DOI: 10.1016/j.compmedimag.2010.08.001</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Celebi M.E., Quan Wen, Sae Hwang, Iyatomi H., Schaefer G. Lesion border detection in dermoscopy images using ensembles of thresholding methods. Skin Res Technol. 2013;19(1):e252–8.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Celebi M.E., Quan Wen, Sae Hwang, Iyatomi H., Schaefer G. Lesion border detection in dermoscopy images using ensembles of thresholding methods. Skin Res Technol. 2013;19(1):e252–8.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Guo Y., Liu Y., Oerlemans A., Lao S., Wu S., Lew M.S. Deep learning for visual understanding: A review. Neurocomputing. 2016;187:27–48. DOI: 10.1016/j.neucom.2015.09.116</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Guo Y., Liu Y., Oerlemans A., Lao S., Wu S., Lew M.S. Deep learning for visual understanding: A review. Neurocomputing. 2016;187:27– 48. DOI: 10.1016/j.neucom.2015.09.116</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Barata C., Celebi M.E., Marques J.S., Rozeira J. Clinically inspired analysis of dermoscopy images using a generative model. Comput Vis Image Understanding. 2016;151:124–37.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Barata C., Celebi M.E., Marques J.S., Rozeira J. Clinically inspired analysis of dermoscopy images using a generative model. Comput Vis Image Understanding. 2016;151:124–137.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Barata C., Celebi M.E., Marques J.S. Development of a clinically oriented system formelanoma diagnosis. Pattern Recognit. 2017;69:270–85. DOI: 10.1016/j.patcog.2017.04.023</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Barata C., Celebi M.E., Marques J.S. Development of a clinically oriented system formelanoma diagnosis. Pattern Recognit. 2017;69:270– 285. DOI: 10.1016/j.patcog.2017.04.023</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Proceedings of the Third International Skin Imaging Collaboration Workshop (ISIC 2018). In: Stoyanov D., Taylor Z., Sarikaya D., McLeod J., Ballester M.A.G., Codella N.C.F., et al. (eds.). OR 2.0 Contextaware operating theaters, computer assisted robotic endoscopy, clinical image-based procedures, and skin image analysis. Springer; 2018. P. 233–323.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Proceedings of the Third International Skin Imaging Collaboration Workshop (ISIC 2018). In: Stoyanov D., Taylor Z., Sarikaya D., McLeod J., Ballester M.A.G., Codella N.C.F., et al. (eds.). OR 2.0 Context-aware operating theaters, computer assisted robotic endoscopy, clinical image-based procedures, and skin image analysis. Springer; 2018. P. 233–323.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Voss R.K., Woods T.N., Cromwell K.D., Nelson K.C., Cormier J.N. Improving outcomes in patients with melanoma: strategies to ensure an early diagnosis. Patient Relat Outcome Meas. 2015;6:229–42. DOI: 10.2147/PROM.S69351</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Voss R.K., Woods T.N., Cromwell K.D., Nelson K.C., Cormier J.N. Improving outcomes in patients with melanoma: strategies to ensure an early diagnosis. Patient Relat Outcome Meas. 2015;6:229–42. DOI: 10.2147/PROM.S69351</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Petrie T., Samatham R., Witkowski A.M., Esteva A., Leachman SA. Melanoma early detection: big data, bigger picture. J Invest Dermatol. 2019;139(1):25–30. DOI: 10.1016/j.jid.2018.06.187</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Petrie T., Samatham R., Witkowski A.M., Esteva A., Leachman SA. Melanoma early detection: big data, bigger picture. J Invest Dermatol. 2019;139(1):25–30. DOI: 10.1016/j.jid.2018.06.187</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gandini S., Sera F., Cattaruzza M.S., Pasquini P., Abeni D., Boyle P., et al. Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: I. Common and atypical naevi. Eur J Cancer. 2005;41(1):28–44. DOI: 10.1016/j.ejca.2004.10.015</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gandini S., Sera F., Cattaruzza M.S., Pasquini P., Abeni D., Boyle P., et al. Meta-analysis of risk factors for cutaneous melanoma: I. Common and atypical naevi. Eur J Cancer. 2005;41(1):28–44. DOI: 10.1016/j.ejca.2004.10.015</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit26"><label>26</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Salerni G., Carrera C., Lovatto L., Marti-Laborda R.M., Isern G., Palou J., et al. Characterization of 1152 lesions excised over 10 years using total-body photography and digital dermatoscopy in the surveillance of patients at high risk for melanoma. J Am Acad Dermatol. 2012;67(5):836–45. DOI: 10.1016/j.jaad.2012.01.028</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Salerni G., Carrera C., Lovatto L., Marti-Laborda R.M., Isern G., Palou J., et al. Characterization of 1152 lesions excised over 10 years using total-body photography and digital dermatoscopy in the surveillance of patients at high risk for melanoma. J Am Acad Dermatol. 2012;67(5):836–45. DOI: 10.1016/j.jaad.2012.01.028</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit27"><label>27</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Adler N.R., Kelly J.W., Guitera P., Menzies S.W., Chamberlain A.J, Fishburn P., et al. Methods of melanoma detection and of skin monitoring for individuals at high risk of melanoma: new Australian clinical practice. Med J Aust. 2019;210(1):41–47. DOI: 10.5694/mja2.12033</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Adler N.R., Kelly J.W., Guitera P., Menzies S.W., Chamberlain A.J, Fishburn P., et al. Methods of melanoma detection and of skin monitoring for individuals at high risk of melanoma: new Australian clinical practice. Med J Aust. 2019;210(1):41–7. DOI: 10.5694/mja2.12033</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit28"><label>28</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Grajdeanu I.A., Vata D., Statescu L., Popescu I.A., Porumb-Andrese E., Patrascu A.I., et al. Use of imaging techniques for melanocytic naevi and basal cell carcinoma in integrative analysis (Review). Exp Ther Med. 2020;20(1):78–86. DOI: 10.3892/etm.2020.8620</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Grajdeanu I.A., Vata D., Statescu L., Popescu I.A., Porumb-Andrese E., Patrascu A.I., et al. Use of imaging techniques for melanocytic naevi and basal cell carcinoma in integrative analysis (Review). Exp Ther Med. 2020;20(1):78–86. DOI: 10.3892/etm.2020.8620</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit29"><label>29</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Reinehr C.P.H., Bakos R.M. Actinic keratoses: review of clinical, dermoscopic, and therapeutic aspects. An Bras Dermatol. 2019;94(6):637– 57. DOI: 10.1016/j.abd.2019.10.004</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Reinehr C.P.H., Bakos R.M. Actinic keratoses: review of clinical, dermoscopic, and therapeutic aspects. An Bras Dermatol. 2019;94(6):637–657. DOI: 10.1016/j.abd.2019.10.004</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit30"><label>30</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Reinehr C.P.H., Garbin G.C., Bakos R.M. Dermatoscopic patterns of nonfacial actinic keratosis: characterization of pigmented and nonpigmented lesions. Dermatol Surg. 2017;43(11):1385–91. DOI: 10.1097/DSS.0000000000001210</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Reinehr C.P.H., Garbin G.C., Bakos R.M. Dermatoscopic patterns of nonfacial actinic keratosis: characterization of pigmented and nonpigmented lesions. Dermatol Surg. 2017;43(11):1385–91. DOI: 10.1097/DSS.0000000000001210</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit31"><label>31</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zalaudek I., Piana S., Moscarella E., Longo C., Zendri E., Castagnetti F., et al. Morphologic grading and treatment of facial actinic keratosis. Clin Dermatol. 2014;32(1):80–7. DOI: 10.1016/j.clindermatol.2013.05.028</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zalaudek I., Piana S., Moscarella E., Longo C., Zendri E., Castagnetti F., et al. Morphologic grading and treatment of facial actinic keratosis. Clin Dermatol. 2014;32(1):80–7. DOI: 10.1016/j.clindermatol.2013.05.028</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit32"><label>32</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Akay B.N., Kocyigit P., Heper A.O., Erdem C. Dermatoscopy of flat pigmented facial lesions: diagnostic challenge between pigmented actinic keratosis and lentigo maligna. Br J Dermatol. 2010;163(6):1212–17. DOI: 10.1111/j.1365-2133.2010.10025.x</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Akay B.N., Kocyigit P., Heper A.O., Erdem C. Dermatoscopy of flat pigmented facial lesions: diagnostic challenge between pigmented actinic keratosis and lentigo maligna. Br J Dermatol. 2010;163(6):1212– 7. DOI: 10.1111/j.1365-2133.2010.10025.x</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit33"><label>33</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wozniak-Rito A.M., Rudnicka L. Bowen’s Disease in dermoscopy. Acta Dermatovenerol Croat. 2018;26(2):157–61. PMID: 29989873</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wozniak-Rito A.M., Rudnicka L. Bowen’s Disease in dermoscopy. Acta Dermatovenerol Croat. 2018;26(2):157–161. PMID: 29989873</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit34"><label>34</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lin M.J., Pan Y., Jalilian C., Kelly J.W. Dermoscopic characteristics of nodular squamous cell carcinoma and keratoacanthoma. Dermatol Pract Concept. 2014;4(2):9–15. DOI: 10.5826/dpc.0402a02</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lin M.J., Pan Y., Jalilian C., Kelly J.W. Dermoscopic characteristics of nodular squamous cell carcinoma and keratoacanthoma. Dermatol Pract Concept. 2014;4(2):9–15. DOI: 10.5826/dpc.0402a02</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit35"><label>35</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Martin J.M., Wu H., Barta S.K. CD30+ T-cell lymphoproliferative disorders. China Clin Oncol. 2019;8(1):1–8. DOI: 10.21037/cco.2018.09.06</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Martin J.M., Wu H., Barta S.K. CD30+ T-cell lymphoproliferative disorders. China Clin Oncol. 2019;8(1):1–8. DOI: 10.21037/cco.2018.09.06</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit36"><label>36</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hodak E., Amitay-Laish I. Mycosis fungoides: a great imitator. Clin Dermatol. 2019;37(3):255–67. DOI: 10.1016/j.clindermatol.2019.01.004</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hodak E., Amitay-Laish I. Mycosis fungoides: a great imitator. Clin Dermatol. 2019;37(3):255–67. DOI: 10.1016/j.clindermatol.2019.01.004</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit37"><label>37</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lallas A., Apalla Z., Lefaki I., Tzellos T., Karatolias A., Sotiriou E., et al. Dermoscopy of early stage mycosis fungoides. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2013;27:617–21. DOI: 10.1111/j.1468-3083.2012.04499.x</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lallas A., Apalla Z., Lefaki I., Tzellos T., Karatolias A., Sotiriou E., et al. Dermoscopy of early stage mycosis fungoides. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2013;27:617–21. DOI: 10.1111/j.1468-3083.2012.04499.x</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit38"><label>38</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Morariu S.H., Rotaru M., Vartolomei M.D., Turcu M., Chiotoroiu A.L., Suciu M., et al. Pagetoid reticulosis Woringer-Kolopp type, a particular variant of mycosis fungoides: a case report. Rom J Morphol Embryol. 2014;55(4):1469–72. PMID: 25611283</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Morariu S.H., Rotaru M., Vartolomei M.D., Turcu M., Chiotoroiu A.L., Suciu M., et al. Pagetoid reticulosis Woringer-Kolopp type, a particular variant of mycosis fungoides: a case report. Rom J Morphol Embryol. 2014;55(4):1469–72. PMID: 25611283</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit39"><label>39</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ghahramani G.K., Goetz K.E., Liu V. Dermoscopic characterization of cutaneous lymphomas: a pilot survey. Int J Dermatol. 2018;57(3):339– 43. DOI: 10.1111/ijd.13860</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ghahramani G.K., Goetz K.E., Liu V. Dermoscopic characterization of cutaneous lymphomas: a pilot survey. Int J Dermatol. 2018;57(3):339–43. DOI: 10.1111/ijd.13860</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit40"><label>40</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Caccavale S., Vitiello P., Mascolo M., Ciancia G., Argenziano G. Dermoscopy of different stages of lymphomatoid papulosis. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2018;32(5):198–200. DOI: 10.1111/jdv.14706</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Caccavale S., Vitiello P., Mascolo M., Ciancia G., Argenziano G. Dermoscopy of different stages of lymphomatoid papulosis. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2018;32(5):198–200. DOI: 10.1111/jdv.14706</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit41"><label>41</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mascolo M., Piccolo V., Argenziano G., Costa C., Lo Presti M., De Rosa G., et al. Dermoscopy pattern, histopathology and immunophenotype of primary cutaneous B-cell lymphoma presenting as a solitary skin nodule. Dermatology. 2016;232(2):203–7. DOI: 10.1159/000442251</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mascolo M., Piccolo V., Argenziano G., Costa C., Lo Presti M., De Rosa G., et al. Dermoscopy pattern, histopathology and immunophenotype of primary cutaneous B-cell lymphoma presenting as a solitary skin nodule. Dermatology. 2016;232(2):203–7. DOI: 10.1159/000442251</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
