Первичные результаты применения стромально-васкулярной фракции аутологичной жировой ткани при стрессовом недержании мочи у мужчин

Введение. Стрессовое недержание мочи (СНМ) встречается у 10 % мужчин. Наиболее частой причиной возникновения СНМ у мужчин являются последствия операций на предстательной железе. Несмотря на наличие большого количества хирургических и консервативных методов лечения данного заболевания, проблема выбора тактики лечения до сих пор остается актуальной. Имеются ограниченные данные литературы об эффективности использования стромально-васкулярной фракции (СВФ) аутологичного жира в лечении стрессового недержания мочи. Целью данного исследования является анализ эффективности применения СВФ в лечении пациентов СНМ.Материалы и методы. Проводится открытое проспективное рандомизированное исследование. Исследуемая группа включала 8 пациентов со стрессовым недержанием мочи легкой и средней степени тяжести более одного года после радикальной простатэктомии или трансуретральной резекции простаты. Данным пациентам в период с ноября 2017 по июнь 2018 г. было выполнено введение стромально-васкулярной фракции аутологичного жира в зону сфинктера мочевого пузыря.Результаты. На основании Pad test и опросников ICIQ-SF, QoL через 4 недели получены первые положительные клинические результаты и улучшение качества жизни. Контрольными точками для оценки результатов выбраны 3, 6 и 12 месяцев. Цитологический анализ стромально-васкулярной фракции аутологичного жира выявил экспрессию маркеров мезенхимальных стволовых клеток CD44, CD73, CD90, что, вероятнее всего, и обуславливает высокую эффективность данного метода.Заключение. В данной работе отмечено, что трансплантация СВФ из аутологичной жировой ткани представляется эффективным и безопасным методом лечения пациентов с недержанием мочи.

стрессовое недержание мочи, стромально-васкулярная фракция, жировая ткань, аутотрансплантация, мезенхимные стромальные клетки

1. Guiting Lin, Huixi Li, Tom F. Lue AB046. Potential application of adipose derived stem cells for urological disease. Transl Androl Urol. 2015;4(Suppl 1):AB046. DOI: 10.3978/j.issn.2223-4683.2015.s046

2. Павлов В.Н., Измайлова С.М., Измайлов А.А., Викторова Т.В. Роль генетических факторов в формировании злокачественных новообразований мочевого пузыря. Онкоурология. 2008;(2):35–9.

3. Павлов В.Н., Казихинуров А.А., Ишемгулов Р.Р., Казихинуров Р.А., Галимзянов В.З., Махмутов А.Р. и др. Роль лазерной допплеровской флоуметрии как диагностического критерия расстройств микроциркуляции пузырно-уретрального сегмента и предстательной железы. Урология. 2008;(4):27–30.

4. Salomon L., Droupy S., Yiou R., Soulié M. Functional results and treatment of functional dysfunctions after radical prostatectomy. Prog Urol. 2015;25(15):1028–66. DOI: 10.1016/j.purol.2015.07.013

5. Wiafe B., Metcalfe P.D., Adesida A.B. Stem cell therapy: current applications and potential for urology. Curr Urol Rep. 2015;16(11)77. DOI: 10.1007/s11934-015-0551-5

6. Yamamoto T., Momokazu G., Ryohei H., Toriyama K. Periurethral injection of autologous adipose-derived stem cells for the treatment of stress urinary incontinence in patients undergoing radical prostatectomy: Report of two initial cases. Int J Urol. 2010;17(1):75–82. DOI: 10.1111/j.1442-2042.2009.02429.x

7. Alwaal A., Hussein A.A., Lin C.S., Lue T.F. Prospects of stem cell treatment in benign urological diseases. Korean J Urol. 2015;56(4):257–65. DOI: 10.4111/kju.2015.56.4.257

8. Davis N.F., Cunnane E.M., O’Brien F.J., Mulvihill J.J., Walsh M.T. Tissue engineered extracellular matrices (ECMs) in urology: Evolution and future directions. Surgeon. 2018;16(1):55–65. DOI: 10.1016/j.surge.2017.07.002

9. Basu J., Genheimer C.W., Guthrie K.I., Sangha N., Quinlan S.F., Bruce A.T. et al. Expansion of the human adipose-derived stromal vascular cell fraction yields a population of smooth muscle-like cells with markedly distinct phenotypic and functional properties relative to mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part C Methods. 2011;17(8):843–60. DOI: 10.1089/ten.tec.2010.0697

10. Chatterjee S., Laliberte M., Blelloch S., Ratanshi I., Safneck J., Buchel E. et al. Adipose-derived stromal vascular fraction differentially expands breast progenitors in tissue adjacent to tumors compared to healthy breast tissue. Plast Reconstr Surg. 2015;136(4):414–25. DOI: 10.1097/PRS.0000000000001635

11. You D., Jang M.J., Lee J., Suh N., Jeong I.G., Sohn D.W. et al. Comparative analysis of periprostatic implantation and intracavernosal injection of human adipose tissue-derived stem cells for erectile function recovery in a rat model of cavernous nerve injury. Prostate. 2013;73(3):278–86. DOI: 10.1002/pros.22567

12. Naaijkens B.A., van Dijk A., Kamp O., Krijnen P.A., Niessen H.W., Juffermans L.J. Therapeutic application of adipose derived stem cells in acute myocardial infarction: lessons from animal models. Stem Cell Rev. 2014;10(3):389–98. DOI: 10.1007/s12015-014-9502-7

13. Brown N.K., Zhou Z., Zhang J., Zeng R., Wu J., Eitzman D.T. et al. Perivascular adipose tissue in vascular function and disease: a review of current research and animal models. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014;34(8):1621–30. DOI: 10.1161/ATVBAHA.114.303029

14. Farini A., Sitzia C., Erratico S., Meregalli M., Torrente Y. Clinical applications of mesenchymal stem cells in chronic diseases. Stem Cells Int. 2014;2014:306573. DOI: 10.1155/2014/306573

15. Zhao W., Zhang C., Jin C., Zhang Z., Kong D., Xu W. et al. Periurethral injection of autologous adipose-derived stem cells with controlledrelease nerve growth factor for the treatment of stress urinary incontinence in a rat model. Eur Urol. 2011;59(1):155–63. DOI: 10.1016/j.eururo.2010.10.038

16. Boissier R., Magalon J., Sabatier F., Veran J., Giraudo L., Giusiano S. Histological and urodynamic effects of autologous stromal vascular fraction extracted from fat tissue with minimal ex vivo manipulation in a porcine model of intrinsic sphincter deficiency. J Urol. 2016;196(3):934–42. DOI: 10.1016/j.juro.2016.04.099

17. Tran C., Damaser M.S. The potential role of stem cells in the treatment of urinary incontinence. Ther Adv Urol. 2015;7(1):22–40. DOI: 10.1177/1756287214553968

18. Yamamoto T., Gotoh M., Kato M., Majima T., Toriyama K., Kamei Y. et al. Periurethral injection of autologous adipose-derived regenerative cells for the treatment of male stress urinary incontinence: Report of three initial cases. Int J Urol. 2012;19(7):652–9. DOI: 10.1111/j.1442-2042.2012.02999.x

19. Ullah I., Subbarao R.B., Rho G.J. Human mesenchymal stem cells — current trends and future prospective. Biosci Rep. 2015;35(2):e00191. DOI: 10.1042/BSR20150025

20. Bara J.J., Richards R.G., Alini M., Stoddart M.J. Concise review: Bone marrow-derived mesenchymal stem cells change phenotype following in vitro culture: implications for basic research and the clinic. Stem Cells. 2014;32(7):1713–23. DOI: 10.1002/stem.1649