Перейти к:
Неолимфогенез и иммуногистохимическое исследование лимфатических узлов при раке молочной железы
https://doi.org/10.24060/2076-3093-2019-9-4-266-272
Аннотация
Введение. Ранее проведенные нами исследования доказали, что постнатально сформированные лимфатические узлы могут служить источником биологических сигналов, активирующих противоопухолевые реакции иммунитета и подавляющих распространение метастазирующих злокачественных клеток.
Цель работы: определение экспрессии CD3, CD20, CD68 в нативных, сторожевых и постнатально индуцированных лимфатических узлах аксиллярной зоны при раке молочной железы.
Материалы и методы. Исследованию подвергались готовые оцифрованные изображения иммуногистохимической экспрессии фиксированной панели антител CD3, CD20, CD68. Проводили количественную оценку экспрессии методом подсчета экспрессированных клеток в каждом исследованном узле по четырем основным структурно-функциональным зонам.
Результаты и обсуждение. Результаты сравнительного иммуногистохимического исследования нативных, сторожевых и постнатально индуцированных лимфатических узлов показали, что содержание CD3, CD20, CD68 в различных структурах лимфатических узлов имело принципиальные отличия.
Выводы
1. В постнатально индуцированных лимфатических узлах отчетливо выявлена отличная от нативных и сторожевых лимфатических узлов экспрессия антител к основным иммунокомпетентным клеткам, реализующих в лимфатическом узле ключевые иммунные реакции, что может указывать на повышенный функциональный статус новообразованных лимфоузлов.
2. Проведенное исследование демонстрирует высокий уровень антигенной стимуляции Т- и В-лимфоцитов в ПНИЛУ, а также указывает на возможную роль клеток макрофагального ряда в стимуляции неолимфогенеза и образования новых лимфоузлов.
3. Реализация данного научного проекта позволяет в дальнейших научных изысканиях заложить фундаментальные основы для исследований, посвященных постнатальным индуцированным лимфатическим узлам у онкологических больных.
Ключевые слова
Для цитирования:
Ганцев Ш.Х., Рустамханов Р.А., Кзыргалин Ш.Р., Турсуметов Д.С. Неолимфогенез и иммуногистохимическое исследование лимфатических узлов при раке молочной железы. Креативная хирургия и онкология. 2019;9(4):266-272. https://doi.org/10.24060/2076-3093-2019-9-4-266-272
For citation:
Gantsev S.K., Rustamkhanov R.A., Kzyrgalin S.R., Tursumetov D.S. Neolymphogenesis and Immunogistogochemical Study of Lymph Nodes in Breast Cancer. Creative surgery and oncology. 2019;9(4):266-272. (In Russ.) https://doi.org/10.24060/2076-3093-2019-9-4-266-272
Введение
Неолимфогенез — процесс образования и развития новых лимфатических узлов в постнатальном периоде. По данным классических анатомических изданий, формирование лимфатической системы у человека завершается на этапе эмбриогенеза и все изменения сводятся к уменьшению количества, общей массы лимфоидной ткани и ее активности. Вновь образованный лимфатический узел имеет единый сосуд — афферентный и эфферентный (в норме — 4-6 афферентных и 1 эфферентный сосуд). Наличие вновь образованных лимфатических узлов, по предварительным наблюдениям, свидетельствует о прекращении функциональной активности первого анатомического этапа-барьера сторожевого лимфатического узла (СЛУ) на пути распространения раковых клеток [1].
В норме различные лимфоидные структуры возникают лишь в процессе развития плода, однако при длительных хронических воспалительных процессах, длительно не заживающих ранах, аутоиммунных и онкологических заболеваниях обнаружено реактивное новообразование различных лимфоидных структур [2, 3].
Исследования в области изучения постнатально индуцированных лимфатических узлов (третичных лимфоидных органов, лимфоидного неогенеза) ведутся в международном научном сообществе очень активно. Предполагается, что появление вновь образованных лимфатических узлов при злокачественных опухолях можно рассматривать с позиций сложных механизмов взаимодействия иммунной системы с опухолью и ее метастазами. В частности, в постнатальных индуцированных лимфатических узлах (ПНИЛУ) у онкологических больных выявлены изменения экспрессии генов, кодирующих определенные провоспалительные цитокины, хемокины и рецепторы, что может оказывать влияние на процесс распространения злокачественных клеток [4].
Ранее проведенные нами исследования доказали, что постнатально сформированные лимфатические узлы могут служить источником биологических сигналов, активирующих противоопухолевые реакции иммунитета и подавляющих распространение метастазирующих злокачественных клеток [5].
Так, сравнение профиля РНК, содержащихся в ткани гистологически нормальных и третичных лимфатических узлов, которые были обнаружены при исследовании операционного материала у больных раком молочной железы, показало повышенную экспрессию в ПНИЛУ генов, кодирующих рецепторы XCR1 и CYFIP2, цитокины TNFSF14 и CCL16, а также сниженную экспрессию лигандов хемокинов CXCL5 и CXCL12 [6]. Неопластические злокачественные новообразования во многих своих свойствах сходны со средой хронического воспаления, в том числе с хроническим течением самого воспаления. Тем не менее злокачественные опухоли отличаются от хронического воспаления по одному существенному признаку, который, как считают некоторые ученые, может предотвратить образование третичных лимфоидных структур высокоиммуносупрессивного микроокружения опухоли [7]. Однако, согласно последним исследованиям независимых ученых по всему миру, ТЛС различных степеней организации встречается у пациентов с различными видами первичных и метастазирующих опухолей [8-19].
Существуют представления о том, что индукция неолимфогенеза может быть использована для протезирования функции иммунной системы [20], а воздействие на состояние этих структур с использованием лекарственных средств или методов биотерапии может послужить основой для создания новых подходов к лечению онкологических больных [21].
Для иммуногистохимического исследования были выбраны антитела к основным иммунокомпетентным клеткам, реализующим в лимфатическом узле ключевые иммунные реакции.
Цель работы — определение экспрессии CD3, CD20, CD68 в нативных, сторожевых и постнатально индуцированных лимфатических узлах аксиллярной зоны при раке молочной железы.
Материалы и методы
Объектом исследования являлись лимфатические узлы при раке молочной железы аксиллярной области со стороны поражения опухолью. В исследование включались пациенты с установленным диагнозом «рак молочной железы» в стадиях IIIA, IIIB, IIIC. Во время операции, на этапе выделения аксиллярных лимфоузлов, при помощи красителя метиленового синего производили детекцию сторожевого лимфатического узла путем введения контраста в околонодулярную клетчатку. Макропрепарат (молочная железа с аксиллярными лимфатическими узлами и сосудами в едином блоке), полученный после операции — мастэктомии с аксиллярной лимфодиссекцией, подвергался сонолиподе- струкции, так как эта методика позволяет детально визуализировать структурные компоненты аксиллярного лимфатического коллектора.
После этапа сонолиподеструкции мы получили детализированную карту лимфатических узлов и сосудов аксиллярной области. Введение контраста во время операции позволило нам выявить 3 группы лимфатических узлов.
- Нативные неизмененные лимфатические узлы (НЛУ). Полностью окрашенные метиленовым синим мы принимали за функционально активные, не измененные опухолевым процессом лимфатические узлы. Для них характерным было наличие нескольких (4-6) афферентных и одного эфферентного лимфатического сосуда.
- Новообразованные, постнатально индуцированные лимфатические узлы (ПНИЛУ). Также были полностью окрашены метиленовым синим, как следствие, видимо, функционально активных и не задействованных в метастатическом процессе. Отличительной характеристикой ПНИЛУ было наличие единого афферентного и эфферентного лимфатического сосуда.
- Сторожевые лимфатические узлы (СЛУ). Окрашены метиленовым синим частично, по нашему мнению, за счет блокады сторожевого лимфатического узла метастатическими клетками опухоли. В отличие от нативных и новообразованных у сторожевых лимфоузлов количество отводящих лимфу сосудов было значительно больше, их количество коррелировало с задействованными в метастатическом процессе лимфатическими узлами. Чем больше было выявлено лимфоузлов, блокированных метастазами, тем больше лимфатических сосудов мы визуализировали отходящими от сторожевого лимфоузла.
Лимфатические узлы фиксировали в 10 % растворе нейтрального формалина, обрабатывали по стандартной гистологической методике и заливали в парафин. Гистологические срезы толщиной 1 мкм, изготовленные на микротоме Leica RM 2235, Германия, окрашивали гематоксилином и эозином.
Для иммуногистохимического исследования использовали аппарат для иммуногистохимии «Бонд-Макс» (Bond-maX), Австралия. Цифровые изображения полученной иммуногистохимической экспрессии получали посредством сканирования готовых гистологических микропрепаратов на цифровом сканере микропрепаратов Leica Aperio AT2 производства Германии. Работа по оценке экспрессии выполнялась с использованием программного обеспечения Digital Pathology. Исследованию подвергались готовые оцифрованные изображения иммуногистохимической экспрессии фиксированной панели антител CD3, CD20, CD68. Для оценки результатов иммуногистохимической реакции проводили подсчет экспрессированных клеток на 2000 клеток в 10 случайным образом отобранных полях зрения (при увеличении х40). Учитывали умеренное и выраженное иммуногистохимическое окрашивание. Сравнительное исследование проводили в следующих группах: (1) сторожевые лимфатические узлы; (2) нативные лимфатические узлы; (3) постнатально индуцированные лимфатические узлы.
Экспрессированные клетки считали по основным структурно-функциональным зонам лимфоузлов, по каждому маркеру в отдельности:
- кортикальный синус;
- промежуточный синус;
- паракортикальная зона;
- лимфоидные фолликулы.
В работе использовались антитела согласно протоколу фирмы-изготовителя Leica, страна-производитель Великобритания (табл. 1).
Антитело | Клон | Специфичность | Разведение антител |
---|---|---|---|
CD3 | LN10 | Т-лимфоциты | 1/50 |
CD20 | MJ1 | В-лимфоциты | RTU |
CD68 | 514H12 | Все макрофаги | RTU |
Таблица 1. Характеристики антител, использованных в работе
Table 1. Characteristics of antibodies used in the work
Для удобства визуализации чувствительности разных структурно-функциональных зон к исследованным маркерам использовали рандомную шкалу распределения процентов по степени экспрессии антител (табл. 2).
% | Степень экспрессии антител |
---|---|
100 | +++ |
90 | +++ |
80 | ++ |
70 | ++ |
60 | + |
50 | + |
40 | +/- |
30 | +/- |
20 | - |
10 | - |
0 | -- |
Таблица 2. Шкала распределения процентов по степени экспрессии антител
Table 2. Percentage Scale for Antibody Expression
Результаты и обсуждение
Результаты сравнительного иммуногистохимического исследования НЛУ СЛУ и ПНИЛУ показали, что содержание CD3, CD20, CD68 в различных структурах лимфатических узлов имело принципиальные отличия, поэтому приводим последовательное описание этих особенностей в тканях различных лимфатических узлов.
В ткани СЛУ CD3 Т-клетки локализовались преимущественно в паракортикальной зоне (рис. 1а). Экспрессия CD20+ В-лимфоцитов выявлялись больше всего в лимфоидных фолликулах, чуть меньше в па- ракортикальной зоне, некоторое количество клеток встречалось в промежуточных синусах и единичные клетки выявлялись в кортикальном синусе (рис. 1б). В ткани НЛУ CD68+ макрофаги/гистиоциты локализовались преимущественно в промежуточных синусах, в краевом синусе их было значительно меньше. В паракортикальной зоне и лимфоидных фолликулах встречались единичные экспрессированные CD68+-клетки (рис. 1в).
Рисунок 1. СЛУ: А — СР3+-клетки локализуются преимущественно в паракортикальной зоне; Б — CD20+-клетки в лимфоидных фолликулах в паракортикальной зоне; В — CD68+-макрофаги/гистиоциты локализуются преимущественно в промежуточных синусах. Непрямое иммунопероксидазное окрашивание с антителами к CD3, CD20, CD68, докрашивание гематоксилином; х20, х40, х40
Figure 1. Sentinel lymph nodes. А) CD3+-cells are localized mainly in the paracortical zone; Б) CD20+-cells in lymphoid follicles in the paracortical zone; В) CD68+-macrophages / histiocytes are localized mainly in the intermediate sinuses. Indirect immunoperoxidase staining with antibodies to CD3, CD20, CD68, additional staining with hematoxylin: х20, х40, х40
В ткани НЛУ CD3+ Т-клетки локализовались преимущественно в паракортикальной зоне (рис. 2а). Экспрессия CD20+ В-лимфоцитов выявлялись больше всего в лимфоидных фолликулах, чуть меньше в паракортикальной зоне, некоторое количество клеток встречалось в промежуточных синусах и единичные клетки выявлялись в кортикальном синусе (рис. 2б). В ткани НЛУ CD68+ макрофаги/гистиоциты локализовались преимущественно в промежуточных синусах, в краевом синусе их было значительно меньше. В паракортикальной зоне и лимфоидных фолликулах встречались единичные экспрессированные CD68+-клетки (рис. 2в).
Рисунок 2. НЛУ: А — CD3+-клетки локализуются преимущественно в паракортикальной зоне; Б — CD20+-клетки в лимфоидных фолликулах в паракортикальной зоне; В — CD68+-макрофаги/гистиоциты локализуются преимущественно в промежуточных синусах. Непрямое иммунопероксидазное окрашивание с антителами к CD3, CD20, CD68, докрашивание гематоксилином; х20, х20, х20
Figure 2. Native lymph nodes. А) CD3+-cells are localized mainly in the paracortical zone; Б) CD20+-cells in lymphoid follicles in the paracortical zone; В) CD68+-macrophages/histiocytes are localized mainly in the intermediate sinuses. Indirect immunoperoxidase staining with antibodies to CD3, CD20, CD68, additional staining with hematoxylin: х20, х20, х20
В ткани ПНИЛУ CD3 Т-клетки выявлялась выраженная экспрессия в краевом и промежуточном синусах и паракортикальной зоне. В лимфоидных фолликулах экспрессировались 25 % CD3+-клеток (рис. 3а). Экспрессия CD20+ В-лимфоцитов выявлялась больше всего в лимфоидных фолликулах, чуть меньше в паракортикальной зоне, среднее количество клеток встречалось в промежуточных синусах и кортикальном синусе (рис. 3б). В ткани НЛУ CD68+-макрофаги/гистиоциты локализовались преимущественно в промежуточных синусах, в краевом синусе их было значительно меньше. В паракортикальной зоне и лимфоидных фолликулах встречались единичные экспрессированные CD68+- клетки (рис. 3в).
Рисунок 3. ПНИЛУ: А — в лимфоидных фолликулах экспрессировались 25 % CD3+-клеток; Б — CD20+-клетки в лимфоидных фолликулах в паракортикальной зоне; В — CD68+-макрофаги/гистиоциты локализуются преимущественно в промежуточных синусах. Непрямое имму- нопероксидазное окрашивание с антителами к CD3, CD20, CD68, докрашивание гематоксилином; х40, х20, х20
Figure 3. Postnatally formed lymph nodes. А) 25% of CD3+-cells were expressed in lymphoid follicles; Б) CD20+-cells in the lymphoid follicles in the paracortical zone; В) CD68+-macrophages/histiocytes are localized mainly in the intermediate sinuses. Indirect immunoperoxidase staining with antibodies to CD3, CD20, CD68, additional staining with hematoxylin: х40, х20, х20.
Процентное соотношение экспрессий каждой из структурно-функциональных зон лимфоузлов переведено в степени экспрессии по трем группам лимфоузлов (табл. 3-5).
| Кортикальный синус | Промежуточные синусы | Паракортикальная зона | Лимфатические фолликулы |
---|---|---|---|---|
CD3 | +++ | +++ | ++ | - |
CD20 | - | +/- | +++ | +++ |
CD68 | - | ++ | -- | -- |
Таблица 3. Степени экспрессии антител сторожевых лимфатических узлов
Table 3. Antibody expression in sentinel lymph nodes
| Кортикальный синус | Промежуточные синусы | Паракортикальная зона | Лимфатические фолликулы |
---|---|---|---|---|
CD3 | +/- | +/- | ++ | - |
CD20 | - | +/- | ++ | +++ |
CD68 | - | + | -- | -- |
Таблица 4. Степени экспрессии антител нативных лимфатических узлов
Table 4. Antibody expression in sentinel lymph nodes
| Кортикальный синус | Промежуточные синусы | Паракортикальная зона | Лимфатические фолликулы |
---|---|---|---|---|
CD3 | +++ | +++ | +++ | - |
CD20 | + | - | ++ | +++ |
CD68 | - | +/- | -- | -- |
Таблица 5. Степени экспрессии антител постнатально индуцированных лимфатических узлов
Table 5. Antibody expression in postnatally formed lymph nodes
Таким образом, в результате проведенного исследования получены данные по интерпретации иммуногистохимического профиля лимфатических узлов (нативных, сторожевых и постнатально индуцированных) при раке молочной железы.
Выводы:
- В постнатально индуцированных лимфатических узлах отчетливо выявлена отличная от нативных и сторожевых лимфатических узлов экспрессия антител к основным иммунокомпетентным клеткам, реализующих в лимфатическом узле ключевые иммунные реакции, что может указывать на повышенный функциональный статус новообразованных лимфоузлов.
- Проведенное исследование демонстрирует высокий уровень антигенной стимуляции Т- и В-лимфоцитов в ПНИЛУ, а также указывает на возможную роль клеток макрофагального ряда в стимуляции неолимфогенеза и образования новых лимфоузлов.
- Реализация данного научного проекта позволяет в дальнейших научных изысканиях заложить фундаментальные основы для исследований, посвященных постнатальным индуцированным лимфатическим узлам у онкологических больных. На основе полученных данных мы приблизились к выявлению ключевых белков, задействованных в процессе формирования постнатально индуцированных лимфатических узлов.
Информация о конфликте интересов. Конфликт интересов отсутствует.
Информация о финансировании. Данная работа не финансировалась.
Список литературы
1. Ганцев Ш.Х., Галеев М.Г., Ганцев К.Ш., Кзыргалин Ш.Р., Турсуметов Д.С., Рустамханов Р.А. и др. Лимфатический узел и его микроокружение при раке молочной железы. Москва: МИА; 2019. 280 с.
2. Бородин Ю.И., Горчакова О.В., Горчаков В.Н. Периферические лимфоидные структуры: образование и функция. Морфология. 2016;(4):90–6.
3. Corsiero E., Delvecchio F.R., Bombardieri M., Pitzalis C. B cells in the formation of tertiary lymphoid organs in autoimmunity, transplantation and tumorigenesis. Curr Opin Immunol. 2019;57:46–52. DOI: 10.1016/j.coi.2019.01.004
4. Ганцев Ш.Х., Рустамханов Р.А., Ганцев К.Ш., Кзыргалин Ш.Р. Третичные лимфоидные структуры (лимфоидный неогенез). Иммунология. 2019;40(2):58–63. DOI: 10.34411/0306-4953-301913008
5. Gantsev S.K., Umezawa K., Islamgulov D.V., Khusnutdinova E.K., Ishmuratova R.S., Frolova V.Y., et al. The role of inflammatory chemokines in lymphoid neoorganogenesis in breast cancer. Biomed Pharmacother. 2013;67(5):363–6. DOI: 10.1016/j.biopha.2013.03.017
6. Ганцев Ш.Х., Пухов А.Г., Хуснутдинова Э.К., Галеев М.Г., Ганцев К.Ш., Ишмуратова Р.Щ. и др. Неолимфогенез и профиль экспрессии хемокинов при раке молочной железы. Креативная хирургия и онкология. 2012;(1):4–9. DOI: 10.24060/2076-3093-2012-0-1-4-9
7. Joyce J.A., Fearon D.T. T cell exclusion, immune privilege, and the tumor microenvironment. Science. 2015;(348):74–80. DOI: 10.1126/science.aaa6204
8. Goc J., Germain C., Vo-Bourgais T.K.D., Lupo A., Klein C., Knockaert S., et al. Dendritic cells in tumor-associated tertiary lymphoid structures signal a Th1 cytotoxic immune contexture and license the positive prognostic value of infiltrating CD8+ T cells. Cancer Res. 2014;74(3):705–15. DOI: 10.1158/0008-5472. CAN-13-1342
9. Bento D.C., Jones E., Junaid S., Tull J., Williams G.T., Godkin A., et al. High endothelial venules are rare in colorectal cancers but accumulate in extra-tumoral areas with disease progression. Oncoimmunology. 2015;4(3):e974374. DOI: 10.4161/2162402X.2014.974374
10. Di Caro G., Bergomas F., Grizzi F., Doni A., Bianchi P., Malesci A., et al. Occurrence of tertiary lymphoid tissue is associated with T-cell infi ltration and predicts better prognosis in early-stage colorectal cancers. Clin Cancer Res. 2014;20(8):2147–58. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR13-2590
11. Figenschau S.L., Fismen S., Fenton K.A., Fenton C., Mortensen E.S. Tertiary lymphoid structures are associated with higher tumor grade in primary operable breast cancer patients. BMC Cancer. 2015;15:101. DOI: 10.1186/ s12885-015-1116-1
12. Song I.H., Heo S.-H., Bang W.S., Park H.S., Park I.A., Kim Y.A., et al. Predictive value of tertiary lymphoid structures assessed by high endothelial venule counts in the neoadjuvant setting of triple-negative breast cancer. Cancer Res Treat. 2017;49(2):399–407. DOI: 10.143/crt.2016.215
13. García-Hernández M.L., Uribe-Uribe N.O., Espinosa-González R., Kast W.M., Khader S.A., Rangel-Moreno J. A unique cellular and molecular microenvironment is present in tertiary lymphoid organs of patients with spontaneous prostate cancer regression. Front Immunol. 2017;8:563. DOI: 10.3389/fi mmu.2017.00563
14. Kroeger D.R., Milne K., Nelson B.H. Tumor-infiltrating plasma cells are associated with tertiary lymphoid structures, cytolytic T-cell responses, and superior prognosis in ovarian cancer. Clin Cancer Res. 2016;22(12):3005–15. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-15-2762
15. Hiraoka N., Ino Y., Yamazaki-Itoh R., Kanai Y., Kosuge T., Shimada K. Intratumoral tertiary lymphoid organ is a favourable prognosticator in patients with pancreatic cancer. Br J Cancer. 2015;112(11):1782–90. DOI: 10.1038/bjc.2015.145
16. Finkin S., Yuan D., Stein I., Taniguchi K., Weber A., Unger K., et al. Ectopic lymphoid structures function as microniches for tumor progenitor cells in hepatocellular carcinoma. Nat Immunol. 2015;16(12):1235–44. DOI: 10.1038/ ni.3290
17. Sakai Y., Hoshino H., Kitazawa R., Kobayashi M. High endothelial venule-like vessels and lymphocyte recruitment in testicular seminoma. Andrology. 2014;2(2):282–9. DOI: 10.1111/j.2047-2927.2014.00192.x
18. Giraldo N.A., Becht E., Pagès F., Skliris G., Verkarre V., Vano Y., et al. Orchestration and prognostic signifi cance of immune checkpoints in the microenvironment of primary and metastatic renal cell cancer. Clin Cancer Res. 2015;21(13):3031–40. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-14-2926
19. Low S., Sakai Y., Hoshino H., Hirokawa M., Kawashima H., Higuchi K., et al. High endothelial venule-like vessels and lymphocyte recruitment in diffuse sclerosing variant of papillary thyroid carcinoma. Pathology. 2016;48(7):666–74. DOI: 10.1016/j.pathol.2016.08.002
20. Ганцев Ш.Х. Новое к теории метастазирования рака и подходам к его лечению. Креативная хирургия и онкология. 2010;(4):5–11.
21. Dieu-Nosjean M.C., Giraldo N.A., Kaplon H., Germain C., Fridman W.H., Sautès-Fridman C. Tertiary lymphoid structures, drivers of the anti-tumor responses in human cancers. Immunol Rev. 2016;271(1):260–75. DOI: 10.1111/imr.12405
Об авторах
Ш. Х. ГанцевРоссия
Ганцев Шамиль Ханафиевич — д.м.н., профессор, директор НИИ онкологии, зав. кафедрой онкологии с курсами онкологии и патологической анатомии
450008, Уфа, ул. Ленина, 3
Р. А. Рустамханов
Россия
Рустамханов Расул Айдарович — ассистент кафедры онкологии с курсами онкологии и патологической анатомии ИДПО
450008, Уфа, ул. Ленина, 3
Ш. Р. Кзыргалин
Россия
Кзыргалин Шамиль Римович — к.м.н., доцент кафедры онкологии с курсами онкологии и патологической анатомии ИДПО
450008, Уфа, ул. Ленина, 3
Д. С. Турсуметов
Россия
Турсуметов Давлат Сайтмуратович — к.м.н., доцент кафедры онкологии с курсами онкологии и патологической анатомии ИДПО
450008, Уфа, ул. Ленина, 3
Рецензия
Для цитирования:
Ганцев Ш.Х., Рустамханов Р.А., Кзыргалин Ш.Р., Турсуметов Д.С. Неолимфогенез и иммуногистохимическое исследование лимфатических узлов при раке молочной железы. Креативная хирургия и онкология. 2019;9(4):266-272. https://doi.org/10.24060/2076-3093-2019-9-4-266-272
For citation:
Gantsev S.K., Rustamkhanov R.A., Kzyrgalin S.R., Tursumetov D.S. Neolymphogenesis and Immunogistogochemical Study of Lymph Nodes in Breast Cancer. Creative surgery and oncology. 2019;9(4):266-272. (In Russ.) https://doi.org/10.24060/2076-3093-2019-9-4-266-272